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新型植物基因組 DNA 提取試劑盒

簡(jiǎn)要描述:新型植物基因組 DNA 提取試劑盒:本試劑盒采用高效、專(zhuān)一結合核酸的離心吸附柱和*特的緩沖系統,適合從各種 不同的新鮮或凍存植物組織中提取基因組 DNA,并可***限度去除植物組織中的雜 質(zhì)。本試劑盒無(wú)需使用酚/氯仿抽提,操作安全。提取的基因組 DNA 片段大、純度 高、質(zhì)量穩定可靠,適用于PCR、熒光定量 PCR、分子標記、文庫構建等實(shí)驗。

  • 產(chǎn)品型號:
  • 廠(chǎng)商性質(zhì):代理商
  • 更新時(shí)間:2024-06-07
  • 訪(fǎng)  問(wèn)  量:381

詳細介紹

品牌其他品牌供貨周期一個(gè)月
應用領(lǐng)域醫療衛生,環(huán)保,化工,生物產(chǎn)業(yè),綜合

新型植物基因組 DNA 提取試劑盒

適用范圍: 

植物 DNA 提取

試劑盒組分:

Buffer FA 80ml

Buffer FB 28ml

Buffer FC 100ml*2

Buffer GW 33ml*2

Buffer GE 20ml

Rnase A(10 mg/ml) 1.2ml

吸附柱 200 個(gè)

保存條件:

Buffer GE 4°C

Rnase A 4°C 

其它組分室溫保存



產(chǎn)品說(shuō)明

本試劑盒采用高效、專(zhuān)一結合核酸的離心吸附柱和特*的緩沖系統,適合從各種不同的新鮮或凍存植物組織中提取基因組 DNA,并可最大限度去除植物組織中的雜質(zhì)。本試劑盒無(wú)需使用酚/氯仿抽提,操作安全。提取的基因組 DNA 片段大、純度高、質(zhì)量穩定可靠,適用于 PCR、熒光定量 PCR、分子標記、文庫構建等實(shí)驗。

自備試劑:無(wú)水乙醇

實(shí)驗前準備及重要注意事項

1.樣品應避免反復凍融,否則會(huì )導致提取的 DNA 片段較小且提取量下降。

2.第一次使用前應按照試劑瓶標簽的說(shuō)明在 Buffer GW 中加入無(wú)水乙醇。使用前請檢查 Buffer FA 和 Buffer FB 是否出現結晶或者沉淀,如有結晶或者沉淀,請將 BufferFA 和 Buffer FB 于 56℃水浴重新溶解。 

操作步驟

1.取植物新鮮組織 50-400mg 左右,加入液氮充分研磨。

2.將研磨后的粉末收集到離心管(自備)中,加入 400ul Buffer FA 和 6ul Rnase A(10 mg/ml),渦旋振蕩 1 分鐘,室溫放置 10 分鐘,使其充分裂解。

注意:1)使用渦旋振蕩或移液器吹打,充分裂解組織,組織裂解不全會(huì )影響最終的 DNA 得率。

2)請勿在使用前將 Buffer FA 與 Rnase A 混合。

3.加入 130ul Buffer FB,混勻,渦旋震蕩 1 分鐘。

4.13,000×g 離心 3 分鐘,將上清移至新的離心管(自備)中。

5. 將上清液再次 14,000×g 離心 5 分鐘,將上清轉移至新的離心管(自備)中。注意:此步驟目的為去除上清液中的沉淀雜質(zhì),使提取基因組 DNA 純度更高。

6.加入 2 倍體積的 Buffer FC,充分混勻(如 450ul 濾液加入 900ul Buffer FC)。注意:加入 Buffer FC 后應立即混勻,可能會(huì )產(chǎn)生沉淀但不影響后續實(shí)驗。

7.將上步所得溶液和沉淀全部加入到已裝入收集管的吸附柱中,若一次不能加完溶液,可分多次轉入。13,000×g 離心 1 分鐘,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中。

8. 向吸附柱中加入 500ul Buffer GW(使用前檢查是否已加入無(wú)水乙醇),13,000×g離心 1 分鐘,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中。注意:如吸附膜呈現綠色,向吸附柱中加入 500ul 無(wú)水乙醇,13,000×g 離心 1 分鐘,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中。

9.重復步驟 8。

10.13,000×g 離心 2 分鐘,倒掉收集管中的廢液。將吸附柱置于室溫數分鐘,以晾干。注意:這一步的目的是將吸附柱中殘余的乙醇去除,乙醇的殘留會(huì )影響后續的酶促反應(酶切、PCR 等)。

11. 將吸附柱放到一個(gè)新離心管(自備)中,向吸附膜的中間部位懸空滴加入 50ulBuffer GE 或滅菌水,室溫放置 2-5 分鐘,13,000×g 離心 1 分鐘,收集 DNA 溶液。-20℃保存 DNA。注意:1)如果下游實(shí)驗對 pH 值或 EDTA 敏感,可以用滅菌水洗脫。洗脫液的 pH值對洗脫效率有很大影響,若用水做洗脫液應保證其 pH 值在 7.0-8.5(可以用 NaOH將水的 pH 值調到此范圍),pH 值低于 7.0 時(shí)洗脫效率不高。2)離心之前室溫孵育 5 分鐘可以增加產(chǎn)量。3)如果要提高 DNA 的終濃度,可以將步驟 10 所得的 DNA 洗脫液重新加至吸附膜上,重復步驟 10;

4)因為保存在水中的DNA會(huì )受到酸性水解作用的影響,如需長(cháng)期保存,推薦用Buffer GE 洗脫并于-20℃保存。 


本產(chǎn)品僅供科研使用,請勿用于臨床診斷及其他用途


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新型植物基因組 DNA 提取試劑盒











































































































































































































































































































































































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